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Phorésie et vecteurs mécaniques

Phorésie et vecteurs mécaniques


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D'après wikipedia et la parasitologie humaine par Burton Jerome Bogitsh, Clint Earl Carter, Thomas N. Oeltmann

Phorèse: Dans ce type de relation symbiotique, le phoronte, généralement le plus petit organisme, est porté mécaniquement par l'autre, généralement plus grand organisme, l'hôte.

Alors, l'hôte agissant en tant que porteur peut-il être appelé un vecteur mécanique ?

En cherchant sur google.books, j'ai trouvé des livres mentionnant :

Comme la parasitologie clinique

Les hôtes qui transmettent des parasites à l'homme sont des vecteurs. Ceux qui sont essentiels dans le cycle de vie sont des vecteurs biologiques ; ceux qui ne sont pas indispensables sont des vecteurs phorétiques ou mécaniques.


Un vecteur mécanique comme un vecteur biologique transfère un parasite à son hôte obligatoire mais le transporte à la surface de son corps alors que l'hôte en phorèse ne porte pas forcément un phoront à un hôte obligatoire (pour interaction parasitaire).

Une relation parasite-vecteur mécanique est peut-être une sorte de phorèse.


Transmission de virus végétaux : 8 méthodes | Virologie

Les points suivants mettent en évidence les huit principales méthodes utilisées pour la transmission des virus végétaux. Les méthodes sont : 1. Transmission du virus par les semences 2. Transmission par multiplication végétative 3. Transmission par des moyens mécaniques 4. Transmission par Cuscuta 5. Transmission par le sol 6. Transmission par les insectes 7. Transmission par les champignons 8. Certains virus vivant dans le sol ont des nématodes vecteurs.

Méthode n° 1. Transmission du virus par les semences :

La transmission par les graines de la plante hôte était auparavant considérée comme jouant un rôle mineur dans la propagation des maladies virales. Récemment, Bennett (1969) a répertorié 53 virus transmis par les graines d'environ 124 espèces végétales.

Les graines jouent un rôle important dans la propagation de quelques virus des légumineuses, du concombre sauvage, des tomates et du virus de la cime frisée du sucre de betterave. Dans ce dernier cas, les graines portent un pourcentage élevé du virus. Le virus, cependant, ne pénètre pas dans l'embryon. Il est transporté dans une partie de la graine des plantes malades.

Méthode # 2. Transmission par multiplication végétative :

C'est l'un des principaux modes de transmission des maladies virales, en particulier de la pomme de terre, de la rose, de la canne à sucre, de la framboise, de la fraise, du navet, des plantes à bulbes, des arbres fruitiers et de nombreuses plantes ornementales.

Les parties végétatives, les plantes infectées telles que les tubercules, les bulbes, les racines, les rejets, les bourgeons et les greffons qui sont utilisés pour la multiplication, contiendront le virus présent chez le parent. Les nouvelles plantes élevées par les méthodes végétatives mentionnées ci-dessus sont presque toujours infectées.

Méthode # 3. Transmission par des moyens mécaniques :

De nombreux virus de la mosaïque sont transmis mécaniquement des plantes malades aux plantes saines par les méthodes suivantes :

(i) Par contact de feuilles infectées et saines provoqué par le vent.

(ii) En frottant le jus des plantes malades sur la surface des feuilles de plantes saines.

(iii) En greffant des bourgeons infectés sur des plantes saines.

(iv) Les outils agricoles jouent également un rôle assez important. Le couteau utilisé pour couper les plantules et le sécateur propageront la maladie.

(v) Certains virus se propagent sous terre par contact entre les racines de plantes malades et saines.

(vi) La manipulation des plantes au moment de la plantation et lors des opérations culturales contribuera également à la propagation de virus tels que la betterave sucrière. Virus du sommet frisé et virus de la mosaïque du concombre.

Méthode # 4. Transmission par Cuscuta :

Dans de nombreux cas, la cuscute (Cuscuta) sert d'agent de transmission et de pont efficace entre l'hôte infecté et les plantes saines en établissant un contact biologique intime à travers ses haustoria.

Méthode # 5. Transmission par le sol :

Un certain nombre de virus sont transmis par le sol. Des exemples courants de virus transmis par le sol sont le virus de la mosaïque de la pomme de terre, la mosaïque de l'avoine, la mosaïque du blé, etc. Dans tous ces cas, la maladie est contractée à partir du sol.

Méthode # 6. Transmission d'insectes :

Certains virus végétaux et animaux se propagent et des particules complètes sont introduites dans les cellules hôtes par des arthropodes vecteurs et même par morsure de chien comme dans la rage. Parmi les arthropodes, les agents les plus importants de propagation des maladies virales sont les insectes.

L'insecte porteur de la maladie est appelé vecteur. Les insectes vecteurs qui jouent un rôle majeur dans la dissémination des virus végétaux sont les pucerons, les cicadelles, les altises, les cochenilles, les thips et les mouches blanches.

La plupart des insectes vecteurs sont des insectes suceurs. Les pucerons transmettent plus de virus végétaux que tout autre insecte. Les cicadelles viennent ensuite dans la liste. Environ trois cents maladies virales végétales sont connues pour avoir des vecteurs d'insertion.

L'insert obtient le virus par ses pièces buccales au moment de se nourrir de la plante malade. Il est ensuite inoculé à la plante saine au moyen de la pièce buccale. Dans de nombreux cas, l'inoculation doit se faire dans un certain tissu ou sur de jeunes feuilles.

Le virus peut rester actif dans le corps du vecteur pendant plusieurs jours. Des cas sont cependant connus lorsque l'infectiosité est bientôt perdue. Il existe également des cas où un vecteur ne peut pas infecter une plante saine immédiatement après s'être nourri d'une plante malade.

Il y a un retard dans le développement du pouvoir infectieux au sein du vecteur. Cette période de développement de l'infectiosité pour le virus au sein du vecteur est appelée période d'incubation. La durée de la période d'incubation varie selon les virus de quelques heures à quelques jours

Il semble également y avoir une certaine relation entre les virus végétaux et les insectes vecteurs qui les transmettent. La nature précise de cette relation est encore inconnue. La maladie virale de la betterave sucrière connue sous le nom de feuille frisée ou de sommité frisée est propagée par la cicadelle Circulifer tenellus.

D'autres insectes suceurs qui se nourrissent de betteraves sucrières sont incapables de transmettre ce virus. D'autre part, le puceron du pêcher est le vecteur du virus de la mosaïque de la betterave à sucre. La cicadelle ne transmet pas ce virus. Les thirps transmettent le virus de la flétrissure tachetée. Tous les vecteurs du groupe jaune des virus sont des cicadelles et du groupe mosaïque sont des pucerons.

Méthode # 7. Transmission par les champignons :

La première preuve du champignon en tant que vecteur de virus végétaux a été trouvée par Gorgon en 1958. Fie a découvert que la laitue malade était invariablement infectée par un chytride du sol, Olpidium. Plus tard, il a découvert que le champignon agit comme un réservoir et un vecteur du virus des grosses veines.

Le virus acquis par le champignon reste dans l'oospore. Ce dernier germe et produit les zoospores qui fonctionnent comme des agents infectieux et pénètrent dans les racines de laitue. De même, Teakle (1960) a signalé que le virus de la nécrose du tabac pénètre dans les racines de son hôte par les zoospores d'O. brassicae.

Méthode # 8. Certains virus vivant dans le sol ont des vecteurs de nématodes :

Les virus animaux peuvent accéder aux animaux supérieurs par la bouche et le nez à cause de la poussière ou des aliments contaminés. Outre l'infection provenant de l'extérieur, le virus peut également être transmis de cellule à cellule, mais la transmission interne n'a pas besoin d'être sous la forme de particules virales.


AVANT QUE NOUS COMMENCIONS. UNE ESPÈCE EST BINÔME

Le scientifique suédois Carolus von Linnaeus (1707-1778) a développé le système de nomenclature binomial qui est encore utilisé aujourd'hui. À titre d'exemple, utilisons l'espèce Homo sapiens (« humains » pour vous, biologistes moléculaires). Homo est le genre, sapiens est le nom trivial (nomen triviale ou épithète spécifique), et ensemble ils forment l'espèce. L'épithète sapiens n'est PAS l'espèce, bien que certains textes très basiques le disent à tort. Rappelles toi. une espèce est binomiale ("deux noms").

Maintenant, on pourrait penser que ma simple explication suffirait. mais ce ne sera pas pour certains d'entre vous. Vous voudrez tester cela lors de votre premier examen. J'aurai quelques questions sur l'examen où (par exemple) je demande le genre et la plupart des étudiants écriront correctement "Homo". Certains d'entre vous essaieront cependant de repenser la question et la réponse "Homo sapiens". Ce n'est pas correct parce que vous avez donné l'espèce, PAS le genre. Ensuite, sur d'autres questions, je demanderai aux élèves l'espèce et ils écriront "sapiens" ou "H. sapiens", qui sont tous deux incorrects car ce qui a été fourni est le nom trivial plutôt que l'espèce (encore une fois, une espèce est les deux noms. binôme).

Donc, pour approfondir un peu cet exercice, disons que je vous demande d'écrire l'espèce pour le botfly humain. La bonne réponse est Dermatobia hominis. Cependant, certains d'entre vous écriront "D. hominis", qui est une abréviation incorrecte et pourrait très bien faire référence à la bactérie, Dermabacter hominis. Plus communément, beaucoup d'entre vous écriront simplement en "hominis", ce qui sera TRÈS incorrect et pourrait faire référence à des espèces telles que les bactéries Actinobaccillus hominis, Cardiobactérie hominis, Dermabacter hominis, Facklamia hominis, ou Staphlocoque hominis, le mycoplasme Mycoplasma hominis, les protistes parasites Blastocystis hominis, Enteromonas hominis, Pentatrichomonas hominis, Sarcocystis hominis, ou Trachipleistophora hominis, ou même le digene Gastrodiscoides hominis. Maintenant, on pourrait aussi utiliser l'épithète "coli" à titre d'exemple (c'est-à-dire Escherichia coli, Balantidium coli, Entamoeba coli. ). Dois-je en dire plus ?


Identification des blattes comme vecteur mécanique d'infections et d'infestations parasitaires à Kuantan, en Malaisie

Contexte et objectifs : Les blattes sont considérées comme des parasites domestiques odieux en raison de leur nature qui peut se nourrir de presque tout. On pense que les blattes sont les vecteurs mécaniques de nombreux types de parasites. Comme cet insecte nocturne se déplace sans discernement d'un endroit à l'autre, la capacité de ramper dans tous les recoins et les crevasses peut l'amener à attraper divers agents pathogènes et parasites qui peuvent être transmis à l'homme. La présente étude visait à identifier les parasites transportés par les cafards dans deux stands de nourriture et deux restaurants à Indera Mahkota, Kuantan. Matériaux et méthodes: Les blattes capturées dans les espèces de Periplaneta americana. Les échantillons de blattes ont été collectés à l'aide de pièges en plastique et de pièges collants. Les échantillons ont été traités en utilisant une solution saline normale pour obtenir des parasites. Une solution saline normale avec les blattes fraîchement tuées a été agitée vigoureusement et observée au microscope optique pour identifier la présence de parasites. Résultats: L'identification des blattes a montré que la plupart des parasites trouvés étaient des acariens. D'autres parasites trouvés, y compris Strongyloïdes des œufs, Strongyloïdes larves et Ascaris des œufs. Aucun kyste de protozoaire n'a été trouvé dans tous les échantillons de blattes de la présente étude. Le nombre de parasites transportés par les cafards capturés dans les étals était plus élevé que le nombre de parasites provenant de cafards capturés dans le restaurant. Un faible niveau d'hygiène au niveau des étals facilite l'infestation de cafards à l'étal par rapport au restaurant. Conclusion: Par conséquent, les blattes servent de support pour les endoparasites et les ectoparasites. Les résultats de la présente étude suggèrent que des mesures préventives appropriées telles que le maintien de la propreté des étals et des restaurants peuvent empêcher l'infestation des cafards.

Afzan Mat Yusof , 2018. Identification des blattes comme vecteur mécanique des infections et infestations parasitaires à Kuantan, en Malaisie. Journal d'entomologie, 15 : 143-148.

Les blattes sont des insectes que l'on trouve couramment dans la plupart des bâtiments artificiels 1 . Un environnement chaud et humide notamment dans la cuisine, les toilettes, le système d'évacuation et même les égouts sont les habitats les plus favorables aux blattes. Les conditions des habitats des blattes sont également un environnement très approprié pour les agents pathogènes tels que les bactéries et les parasites. On croit que le matière organique et le liquide déversé dans un tel endroit a attiré les cafards 2 . Comme les cafards rampent activement partout la nuit, les cafards peuvent ramasser divers agents pathogènes provenant d'habitats sales et être transmis à d'autres endroits 3 . La situation la plus redoutée est lorsque les cafards ont transporté les agents pathogènes dans des lieux de restauration tels que des restaurants et des étals. Les locaux alimentaires qui n'ont pas de bonnes pratiques d'hygiène ont généralement un nombre élevé d'infestations de cafards. Les agents pathogènes seront ramassés tandis que les blattes rampent partout, par exemple dans des habitats sales, peuvent être transmises et contaminer la source de nourriture et contaminer également les ustensiles utilisés pour préparer la nourriture 4 .

Les blattes les plus courantes dans les habitations humaines sont les blattes américaines (Periplaneta americana) et les blattes germaniques (Blatta germanica) 1 . Ces espèces de blattes se trouvent généralement dans les régions tropicales et subtropicales 5 . Les cafards habitent des bâtiments tels que des maisons, des usines, des locaux alimentaires et des égouts. Ces espèces de ravageurs domestiques préfèrent un environnement humide et chaud avec des sources de nourriture abondantes 6 . Cafard américain (Periplaneta americana) est la plus grande espèce de blatte commune 7 . Généralement, les blattes se nourrissent de presque tout, en particulier de produits amylacés, de matières en décomposition, de substances organiques et même d'excréments humains 6 . Comme les blattes se nourrissent de matières fécales humaines, les agents pathogènes entériques des matières fécales seront hébergés dans le corps des blattes et ces agents pathogènes peuvent être transmis à l'homme. Une étude a été réalisée pour montrer que diverses espèces d'agents pathogènes entériques peuvent être isolées des blattes 5 . Les bactéries isolées sont Escherichia coli, Staphylocoque spp., Salmonelle spp. et Shigella spp. 5

Parmi les parasites importants transportés par les blattes figurent les œufs d'helminthes. Les helminthes médicalement importants comprennent les helminthes transmis par le sol. Les espèces d'helminthes isolées des blattes sont Ascaris lumbricoides, Strongyloides stercoralis et Trichuris trichiura 8,9 . Ces helminthes sont responsables d'une charge parasitaire appelée helminthiases et peuvent provoquer des maladies graves chez l'homme 10 . Outre les ovules d'helminthes, la blatte agit également comme vecteur de transmission des kystes protozoaires 11 . Cryptosporidium spp., Giardia spp., Entamoeba histolytica et Entamoeba coli se trouvent sur le corps des cafards ainsi que dans l'intestin 11 . Les protozoaires intestinaux peuvent causer des maladies telles que la diarrhée, la malnutrition et l'inconfort intestinal 11 . La prévalence des parasites intestinaux humains tels que les kystes protozoaires véhiculés par les blattes est très élevée en raison de la mauvaise gestion de l'assainissement 12 .

En Malaisie, très peu d'études ont été menées sur la blatte. L'une des études précédentes a été menée à Selangor pour identifier les bactéries médicalement importantes portées par les cafards. L'étude a rapporté le résultat positif pour des bactéries telles que Salmonelle spp., Shigella spp. et Escheria coli isolé du corps des cafards 5 . Une autre étude réalisée concernant le niveau d'infestations de cafards dans les zones résidentielles humaines. Une étude menée en 1997 à Kuala Lumpur a révélé que Périplanète spp. ont été trouvés en grand nombre par rapport à d'autres espèces de blattes dans les habitats humains 12 . Pendant ce temps, une étude réalisée dans des zones résidentielles de Pulau Pinang a révélé que la blatte américaine (Periplaneta americana) a été signalée comme l'espèce dominante capturée dans la zone résidentielle humaine 13 . Le nombre de blattes capturées dépend du niveau de salubrité du site d'échantillonnage 13 . Cependant, aucune des études n'a été réalisée pour déterminer la survenue d'infections parasitaires chez les blattes.

À la connaissance de l'auteur, il n'existe aucune autre étude réalisée en Malaisie concernant la transmission mécanique des parasites par les cafards. Par conséquent, il s'agissait de la première étude à identifier les parasites transportés par les cafards dans deux restaurants de stands de nourriture et deux à Indera Mahkota, Kuantan. Les résultats de la recherche peuvent être utilisés pour planifier un effort stratégique pour contrôler la population de cafards en Malaisie, augmentant ainsi la sensibilisation au potentiel des cafards en tant que vecteurs de parasites nuisibles.

MATÉRIAUX ET MÉTHODES

Échantillonnage de cafards : Un total de 176 cafards (adultes et nymphes) ont été capturés dans deux étals de nourriture FS1 (3°49&rsquo20.874&rdquoN 103°18&rsquo15.772&rdquoE), FS2 (3°49&rsquo22.339&rdquoN 103°18&rsquo&rsquo&rsquo&rdquoN et two&rsquoE49916. 3°49&rsquo25.499&rdquoN 103°18&rsquo44.600&rdquoE) à Indera Mahkota, Kuantan. Des stands de nourriture, 49 cafards capturés à FS1 et 49 cafards capturés à FS2. Pendant ce temps, le nombre de cafards capturés au restaurant était de 38 cafards de R1 et 40 autres cafards de R2. Les zones d'échantillonnage dans la présente étude ont été choisies en fonction du niveau d'hygiène de la zone environnante. Les cafards ont été capturés à l'aide de pièges en plastique et de pièges collants. Les pièges ont été appâtés et posés pendant 8 à 12 h tous les jours pendant 4 mois à partir de novembre 2017 jusqu'en février 2018. Les pièges ont été posés du soir à 18 h jusqu'au matin à 8 h à divers endroits des lieux choisis. Les emplacements de pose des pièges étaient dans l'endroit sombre et humide à l'intérieur des locaux notamment au niveau de la cuisine et sous l'évier. Les coquerelles ont été séparées selon le site de collecte où les coquerelles ont été capturées pour éviter toute contamination croisée qui pourrait altérer le résultat.

Identification des espèces de blattes : La blatte capturée a été identifiée pour son espèce par ses caractéristiques physiques et distinctives. L'identification a été faite en observant l'apparence sur la base des références bibliographiques. Le cafard le plus commun en Malaisie est de l'espèce Periplaneta americana 5 . Adulte Periplaneta americana a le corps brun rougeâtre avec une bande brun jaunâtre au bord du pronotum. La taille de l'adulte Periplaneta americana mesure environ 3-4 cm et les ailes sont plus longues que son corps. Pendant ce temps, la nymphe du Periplaneta americana a le corps de couleur brun rougeâtre mais sans ailes 14 . Une autre espèce de blatte que l'on trouve couramment en Malaisie est connue sous le nom de blatte germanique ou Blatella germanique 5 . La taille de la blatte germanique est comprise entre 1,1 et 1,6 cm, ce qui la rend beaucoup plus petite que la blatte américaine. La couleur du corps est brun clair à brun foncé et présente deux stries sombres à peu près parallèles sur le pronotum jusqu'à la base des ailes 1,15 . Dans cette étude, les blattes capturées provenaient de la Periplaneta americana espèce. Il n'y avait pas Blatella germanique identifiés à partir de l'échantillonnage.

Exemple de traitement : Les échantillons ont été traités au laboratoire de la Central Research and Animal Facility (CREAM), Kulliyyah of Science, International Islamic University of Malaysia (IIUM), Kuantan. Les blattes ont été mises dans des contenants hermétiques selon le lieu de collecte. Une boule de coton a été trempée dans du chloroforme et ajoutée dans le récipient hermétique pour affaiblir et tuer les cafards. Une fois les cafards tués, ils ont tous été traités immédiatement pour détecter tout agent pathogène présent sur la surface du corps. La méthode de traitement des échantillons pour obtenir les agents pathogènes du corps externe de la blatte a été légèrement modifiée 8,9. Chaque blatte a été placée dans un tube rempli de 5 ml de solution saline normale et a été secouée vigoureusement pendant 2 min. Le tube a été centrifugé à 2000 rpm pendant 5 min. Les sédiments déposés par centrifugation ont été collectés à l'aide d'une pipette et transférés sur des lames de verre pour examen microscopique. Cette étude se concentre sur la blatte en tant que vecteur mécanique des parasites au lieu de vecteur biologique. Par conséquent, l'isolement des parasites des blattes n'a été effectué qu'à partir de la surface externe des blattes.

Techniques de coloration et examen microscopique : Deux types de techniques de coloration ont été utilisés pour l'examen microscopique, à savoir l'utilisation d'iode de Lugol à 1 % et la coloration acido-résistante. L'iode lugol&rsquos a été utilisé pour rehausser l'image des ovules des helminthes 16 . Les sédiments issus de la sédimentation par centrifugation ont été collectés à l'aide de pipettes Pasteur stériles. Une goutte de sédiment a été déposée sur la lame de microscope. Ensuite, une goutte d'iode Lugol&rsquos a été ajoutée sur la lame. Les sédiments et l'iode lugol&rsquos ont été soigneusement mélangés à l'aide d'une autre pipette Pasteur stérile avant d'être recouverts d'une lamelle. La lame a été examinée au microscope optique sous un grossissement total de 100x et 400x. Une coloration acido-résistante ou une coloration de Ziehl-Neelsen modifiée a été utilisée dans cette expérience pour observer les parasites coccidiens 17 . Une goutte de sédiments a été déposée sur la lame pour être séchée à l'air. Une solution de carbol fuchsine a été inondée sur la lame et légèrement chauffée. La carbol fuchsine a été laissée colorer la lame pendant 5 min avant de la rincer à l'eau distillée. La lame a été décolorée en l'immergeant dans de l'alcool acide à 3 % pendant 30 secondes. Ensuite, la lame a été rincée à l'eau distillée. Plus tard, la lame a été contre-colorée en l'immergeant dans du vert malachite pendant environ 1 min. La lame a ensuite été rincée à l'eau distillée et laissée à sécher. La lame a été examinée à l'aide d'un microscope optique.

Prévalence des blattes porteuses parasites capturées dans deux restaurants et deux stands de nourriture à Indera Mahkota, Kuantan : Le tableau 1 montre le nombre total de blattes et le nombre de blattes hébergeant les parasites à la surface du corps. Le plus grand nombre de blattes hébergeant des parasites à la surface du corps provenait des blattes capturées à FS1. Le pourcentage de blattes hébergeant des parasites est le plus élevé à FS1 (83,67 %) suivi de FS2 (73,47 %), R2 (40,00) et enfin R1 (23,68 %).

Prévalence des parasites présents à la surface du corps des blattes : Les données du tableau 2 ont montré le type de parasites véhiculés par les blattes capturées sur le site d'échantillonnage à Indera Mahkota, Kuantan. Chaque site d'échantillonnage s'est révélé positif pour les acariens. Divers œufs d'helminthes ont été identifiés à la surface du corps de blattes capturées à R1, FS1 et FS2. Strongyloïdes spp. des œufs ont été trouvés sur les échantillons de blattes de R1 et FS1. Pendant ce temps, les larves de nématodes de Strongyloïdes spp. ont été trouvés dans des échantillons de blattes collectés à FS1. Pendant ce temps, Ascaris spp. des œufs ont été trouvés dans les échantillons de blattes collectés à FS2. Seuls les échantillons de blattes de R2 étaient porteurs d'acariens et négatifs pour les œufs et les larves d'helminthes. Aucun kyste de protozoaire n'a été trouvé dans tous les échantillons de blattes collectés à Indera Mahkota, Kuantan.

Dans cette étude, les échantillons de cafards collectés dans plusieurs locaux alimentaires à Indera Mahkota, Kuantan étaient positifs pour les parasites intestinaux, y compris les helminthes (Strongyloides stercoralis, Ascaris lumbricoides et ankylostome) et ectoparasite (acariens). Pendant ce temps, le corps externe des blattes était négatif avec les parasites protozoaires. Cette étude a fortement émis l'hypothèse que l'apparition de Strongyloides stercoralis, Ascaris lumbricoides et l'ankylostome pourrait également être dû à la surface épaisse de la paroi de l'œuf conférant ainsi une résistance et une longue survie à la surface du corps des blattes. Pendant ce temps, l'occurrence négative des parasites protozoaires pourrait être due à l'épaisseur de la paroi des kystes de protozoaires qui pourraient ne pas être suffisamment résistants pour survivre dans l'environnement dans cette zone d'étude. Cela a également corroboré les recherches antérieures concernant les helminthes comme étant les parasites intestinaux les plus répandus par rapport à la survie des parasites protozoaires chez les blattes en raison de l'épaisseur de la paroi des ovules des helminthes 18 .

En outre, aucun kyste protozoaire entérique n'a été trouvé, ce qui pourrait être dû au niveau d'assainissement différent dans la zone d'étude environnante. Ce résultat correspond à l'étude réalisée dans la région du delta du Niger au Nigeria, où le nombre d'helminthes isolés de la blatte était plus élevé si elle était capturée dans un endroit insalubre et au contact du sol contaminé par des matières fécales 19 . Plus le niveau d'hygiène était bas, plus il y avait de risques que les cafards entrent en contact avec des objets contaminés.

Les résultats ont également indiqué que les mauvaises pratiques d'élimination des ordures par les restaurants et les étals observés dans cette zone peuvent avoir contribué à la contamination par les helminthes de ces corps externes de cafards. Les résultats sont en accord avec une étude précédente réalisée par Morenikeji et al. 20 dans l'État d'Oyo, au Nigéria. L'étude a révélé que sur un total de 23 cafards étaient transportés des helminthes connus sous le nom de Strongyloides stercoralis, coup de chance et Enterobius vermicularis extérieurement. Aucun des corps externes de blattes n'était positif pour les protozoaires. Les auteurs ont déclaré que la prévalence plus élevée des helminthes pourrait être due à une mauvaise pratique d'élimination des déchets dans leur zone d'étude. Par conséquent, il s'agissait de moyens possibles par lesquels les cafards pouvaient entrer en contact avec les parasites intestinaux des helminthes.

Cependant, cette étude contraste avec plusieurs études précédentes capables d'identifier à la fois les helminthes et les protozoaires sur les blattes externes 21-23. Par exemple, une étude réalisée par les découvertes d'El-Sherbini et El-Sherbini a trouvé Entamoeba histolytica, Balantidium coli, Ascaris lumbricoides, Ancylostoma duodénale, Enterobius vermicularis, Trichuris trichuria et Strongyloides stercoralis des cafards externes dans les locaux 22 . Bien que cette étude n'ait pas pu révéler de parasites protozoaires, l'étude corrobore la conclusion des auteurs selon laquelle les blattes peuvent entraîner la transmission de maladies parasitaires.

Il convient de noter la présence d'acariens sur la surface externe des cafards dans les restaurants et les étals de cette étude. Les cafards capturés dans les étals de nourriture transportent plus d'acariens que les cafards capturés dans les restaurants. Cela pourrait être dû au fait que les environnements environnants des stands de nourriture étaient humides et sales, ce qui constitue un bon habitat pour les acariens et les cafards. La présence d'acariens sur la surface externe des cafards peut être détectée lorsqu'un cafard rampe partout. Les acariens peuvent prospérer dans tous les foyers. Les zones couvertes telles que sous les meubles de la maison qui ont beaucoup de poussière sont un habitat prospère pour les acariens 14,24. Étant donné que les zones couvertes peuvent également protéger les cafards, il est possible que les acariens soient capturés par les cafards car les cafards se cachaient dans des endroits sombres et humides pendant la journée.

Dans l'ensemble, la limite de cette étude est que l'identification était uniquement basée sur la coloration et la microscopie directe pour identifier les parasites sur les blattes externes. En intégrant l'analyse moléculaire, l'identification des parasites est plus précise et fiable. Par conséquent, une future étude sur la caractérisation génotypique de la contamination parasitaire sur les blattes externes est recommandée.

Les blattes agissent comme des vecteurs mécaniques pour divers parasites entériques et ectoparasites en particulier les acariens. Les parasites entériques tels que les larves d'helminthes et les œufs d'helminthes peuvent être identifiés à l'aide de la technique de microscopie. Par conséquent, les résultats de cette étude espéraient sensibiliser les propriétaires de locaux alimentaires à lutter contre l'infestation de cafards en augmentant le niveau d'assainissement de la zone environnante.

ÉNONCÉ D'IMPORTANCE

Cette étude montre la capacité des blattes à fonctionner comme des vecteurs mécaniques pour les entéro- et ectoparasites. A partir de cette étude, il est important de prendre note de la résolution du problème du niveau d'assainissement notamment dans les locaux alimentaires afin d'éviter toute maladie d'origine alimentaire liée à l'infection parasitaire et à l'infestation causée par les blattes.

L'auteur est très reconnaissant aux propriétaires et aux travailleurs des restaurants et des stands de nourriture pour leur aimable coopération au cours de la période d'étude. Pour cette recherche, la source de financement provient de l'Université islamique internationale de Malaisie, dans le cadre du projet IIUM Research Initiative Grants Scheme Foundation (RIGS) n° 16-301-0465.

2: Isaac, C., P.O. Orue, M.I. Iyamu, J.I. Ehiaghe et O. Isaac, 2014. Analyse comparative d'organismes pathogènes chez les cafards de différents milieux communautaires dans l'État d'Edo, au Nigéria. Coréen J. Parasitol., 52 : 177-181.
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3: Etim, S.E., O.E. Okon, PA Akpan, G.I. Ukpong et E.E. Oku, 2013. Prévalence des cafards (Periplanata Americana) dans les ménages de Calabar : Implications pour la santé publique. J. Public Health Epidemiol., 5 : 149-152.
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4: Malik, K., A. Jamil et A. Arshad, 2013. Étude de micro-organismes pathogènes dans les parties externes du corps de la blatte américaine (Periplaneta americana) collectés dans différentes cuisines. IOSR J. Pharm. Biol. Sci., 7 : 45-48.
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Vecteurs diptères et maladies associées

Dr Fredros Okumu est directeur scientifique à l'Ifakara Health Institute et professeur adjoint à l'Institut africain des sciences et de la technologie Nelson Mandela, en Tanzanie. Il est biologiste des moustiques et expert en santé publique travaillant sur des approches durables pour la surveillance, la prévention et le contrôle des maladies à transmission vectorielle. Il est également passionné par l'amélioration des écosystèmes pour les jeunes chercheurs en Afrique. Ses travaux ont été publiés internationalement dans plusieurs revues scientifiques prestigieuses. Il tweete @Fredros_Inc et écrit occasionnellement des articles pour le blog Malaria World.

Dr Marco Pombi est professeur assistant en parasitologie à l'Université Sapienza de Rome, en Italie. En tant qu'entomologiste médical, il a beaucoup travaillé dans les pays d'endémie palustre, explorant plusieurs aspects de la biologie des vecteurs, allant de la biologie évolutive, la spéciation et la génétique des moustiques, à l'écologie et au comportement par rapport à leur rôle de vecteur. He has been developing new sampling methods for surveillance, monitoring and control of disease vectors.


Mechanical stretch exacerbates the cell death in SH-SY5Y cells exposed to paraquat: mitochondrial dysfunction and oxidative stress

Recent studies suggest that traumatic brain injury (TBI) and pesticide exposure increase the risk of Parkinson's disease (PD), but the molecular mechanisms involved remain unclear. Using an in vitro model of TBI, we evaluated the role of mitochondrial membrane potential (ΔΨm) and mitochondrial reactive oxygen species (ROS) induced by stretch on dopaminergic cell death upon paraquat exposure. Human dopaminergic neuroblastoma SH-SY5Y cells grown on silicone membrane were stretched at mild (25%) and moderate (50%) strain prior to paraquat exposure. We observed that moderate stretch (50% strain) increased the vulnerability of cells to paraquat demonstrated by the loss of plasma membrane integrity (propidium iodide-uptake) and decreased mitochondrial activity (MTT assay). Mitochondrial depolarization occurred immediately after stretch, while mitochondrial ROS increased rapidly and remained elevated for up to 4h after the stretch injury. Intracellular glutathione (GSH) stores were also transiently decreased immediately after moderate stretch. Cells treated with paraquat, or moderate stretch exhibited negligible mitochondrial depolarization at 48h post treatment, whereas in cells stretched prior to paraquat exposure, a significant mitochondrial depolarization occurred compared to samples exposed to either paraquat or stretch. Moderate stretch also increased mitochondrial ROS formation, as well as exacerbated intracellular GSH loss induced by paraquat. Overexpression of manganese superoxide dismutase (MnSOD) markedly diminished the deleterious effects of stretch in paraquat neurotoxicity. Our findings demonstrate that oxidative stress induced by mitochondrial dysfunction plays a critical role in the synergistic toxic effects of stretch (TBI) and pesticide exposure. Mitigation of oxidative stress via mitochondria-targeted antioxidants appears an attractive route for treatment of neurodegeneration mediated by TBI.

Mots clés: Mitochondria MnSOD Paraquat Reactive oxygen species Traumatic brain injury.

Déclaration de conflit d'intérêts

Déclaration de conflit d'intérêts

The authors declare that there are no conflicts of interest.

Les figures

Main components of the cell…

Main components of the cell stretching device: 1) a top plate with glass…

Figure 2. Effect of stretch on SH-SY5Y…

Figure 2. Effect of stretch on SH-SY5Y cell survival/death in the presence of paraquat (PQ)

Figure 3. Effect of stretch on ΔΨm

Figure 3. Effect of stretch on ΔΨm

Cells were subject to the indicated strain levels.…

Figure 4. Time course of mitochondrial ROS…

Figure 4. Time course of mitochondrial ROS generation and intracellular GSH levels in SH-SY5Y cells…

Figure 5. Effect of stretch on ΔΨm…

Figure 5. Effect of stretch on ΔΨm of SH-SY5Y cells in the presence or absence…

Figure 6. Effect of stretch on mitochondrial…

Figure 6. Effect of stretch on mitochondrial ROS and intracellular GSH levels in SH-SY5Y cells…

Figure 7. Effect of MnSOD overexpression on…

Figure 7. Effect of MnSOD overexpression on paraquat induced cytotoxicity following stretch injury


Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases (CRPVBD) is a new primary research, gold open access journal from Elsevier. CRPVBD publishes Original Research articles, Short Communications, Letters, Opinion and Methodology articles as well as Reviews, Rapid Reviews and Graphical Reviews.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases (CRPVBD) is a new primary research, gold open access journal from Elsevier. CRPVBD publishes Original Research articles, Short Communications, Letters, Opinion and Methodology articles as well as Reviews, Rapid Reviews and Graphical Reviews, that cover all aspects of human and animal parasitology et vector biology and vector-borne pathogens.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases is a peer-reviewed gold open access (OA) journal and upon acceptance all articles are permanently and freely available. It is part of the Current Opinion and Research (CO+RE) suite of journals. All CO+RE journals leverage the Current Opinion legacy of editorial excellence, high-impact, and global reach, to ensure they are a widely read resource.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases main research areas covered include (but are not restricted to):

  • Diversity, distribution, ecology, life cycles and transmission biology of parasites and arthropod vectors.
  • Identification, taxonomy, systematics and molecular phylogenetics of parasites and arthropod vectors.
  • Surveillance of indigenous and invasive arthropod vectors of public and veterinary health relevance: distribution, abundance and bionomics. Assessment of vector-pathogen relationships and the risk of pathogen transmission and associated disease.
  • Mathematical modelling of parasite and vector populations, parasitic infections, host-parasite and vector-pathogen interactions, and epidemiology of zoonotic and emerging/re-emerging infectious diseases.
  • Impact of environmental change on the transmission dynamics of parasites and the biology, ecology and distribution of intermediate hosts and vectors. Emergence, re(emergence) and globalisation of vectors, pathogens and hosts and One Health.
  • Parasitic and vector-borne diseases of humans, wildlife and domestic, farm and companion animals including studies on immunology, immunopathology, diagnosis and control.
  • Neglected tropical diseases (NTDs): diagnosis, monitoring, control and eradication/elimination. Model-based analyses addressing the transmission dynamics and control of Chagas disease, visceral leishmaniasis, human African trypanosomiasis, soil-transmitted helminths, schistosomiasis, lymphatic filariasis, onchocerciasis and trachoma.
  • Molecular aspects of parasite and vector diversity and evolution including molecular epidemiology and population genetics mechanisms of anti-parasite drug resistance and insecticide resistance in arthropod vectors.
  • Use of genomics, proteomics and bioinformatics technologies to study host-parasite/pathogen and parasite-host-microbiota interactions, and pathogen-microbiome interaction in vectors.
  • Economic impact assessments of parasitic infections or vector-borne diseases.
  • Outbreak investigations and impact assessments.

Topics which may be considered for the journal only if the following requirements are met:

  • Studies assessing prevalence rates of parasites and pathogens in arthropod vectors (ticks, mosquitoes, sand flies) that are ne pas restricted to local or small regional scales et address gaps in large-scale temporal and/or spatial patterns of host-parasite and arthropod-pathogen systems.
  • Major reviews of the systematics and taxonomy of parasites and arthropod vectors that provide a novel background in the field.
  • Assessment of novel chemicals (attractants, adulticides of larvicides) if at an advanced stage with extensive laboratory data and chemical analysis to characterize active ingredients et field data on efficacy and biosafety.
  • Clinical trial studies if these include mechanistic insight into intervention efficacy from parasitology and/or vector data.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases builds on Elsevier's reputation for excellence in scientific publishing and long-standing commitment to communicating reproducible biomedical research targeted at improving human health.


Cationic Lipid Transfection

Specially designed cationic lipids facilitate DNA & siRNA delivery into cells.

Electroporation

Mechanical transfection that electrical pulses to create temporary pores in cell membranes.

In Vivo Transfection

Effective & easy-to-use in vivo RNAi delivery reagents used to achieve phenotypic alternations in animals.

Cotransfection

Simultaneous transfection of 2 separate nucleic acid molecules.

RNAi & siRNA Transfection

Reverse transfect Invitrogen Stealth RNAi or siRNA into mammalian cells in a 24-well format

Transient Transfection

Rapid, scalable, high-yield protein production from transiently transfected suspension cultures.

Stable Transfection

Stable transfection introduces DNA into cells long-term and pass the introduced DNA to their progeny.

Calcium Phosphate Transfection

Reagents to enable the introduction of DNA into eukaryotic cells via calcium phosphate co-precipitation.

CRISPR transfection

We have optimized protocols to achieve high cleavage efficiency and ease of delivery.


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What Are the Applications of Vectors?

Because they are easy to generalize to multiple different topics and fields of study, vectors have a very large array of applications. Vectors are regularly used in the fields of engineering, structural analysis, navigation, physics and mathematics. They are also used on a case-by-case basis to model out different problems and scenarios mathematically.

Vectors are mathematical constructs that include a length and a direction. They can exist in any number of dimensions. Because of this, they are used to simply yet effectively convey information about objects or situations. One of the most common uses of vectors is in the description of velocity. By using vectors, physicists describe the movement of a car in motion using a simple line on a geometric plane. This same principle is also applied by navigators to chart the movements of airplanes and ships.

Vectors are also used to plot trajectories. The movements of any thrown object, such as a football, can be mapped with vectors. Using multiple vectors allows for the creation of a model that encompasses external forces like the wind. By utilizing vector addition on these different forces, mathematicians create an accurate estimate of the path of motion and distance traveled by the object.


Voir la vidéo: 2. La symbiose des racines et des champignons mycorhiziens (Juin 2022).


Commentaires:

  1. Goltizshura

    Je suis désolé, mais je pense que vous vous trompez. Je peux défendre ma position. Envoyez-moi un courriel à PM, nous en discuterons.

  2. Nami

    Je pense qu'ils vous aideront à trouver la bonne solution. Ne vous fâchez pas.



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